什么是聚合酶保真度？

　　DNA聚合酶的保真度是指準確復制目的模板的結果。具體來說，這涉及到多個步驟，包括讀取模板鏈，選擇正確的三磷酸核苷，并將此核苷酸插入3’引物末端的能力。為了區(qū)分正確和錯誤的核苷酸，一些DNA聚合酶具有3’到5’核酸外切酶活性。這種“校正”活性可切除不正確摻入的單核苷酸，并將其替換成正確的核苷酸。高保真PCR使用摻入錯誤率低且具有校正活性的DNA聚合酶，以保證目的DNA的忠實復制。

　　保真度在何時很重要？

　　在設計PCR實驗時，你首先要考慮你的應用是否需要高保真聚合酶。如果實驗結果依賴于正確的DNA序列（如克隆或測序），那么你就要盡量減少錯配核苷酸的摻入。而對于普通PCR或菌落PCR，確定擴增子是否存在或質粒上是否帶有插入片段，那高保真則大可不必。由于某些高保真聚合酶的強勁特性，一些研究人員在所有擴增中都使用它們。

　　如何測定保真度？

　　廠家通過各種不同的方法來確定DNA聚合酶的保真度。ThomasKunkel曾介紹過一種方法，使用M13噬菌體的部分lacZα基因，通過宿主菌落顏色的變化來檢查DNA合成中的錯誤。以Kunkel的分析為基礎，WayneBarnes則開發(fā)出一種分析，利用PCR來復制整個lacZ基因和兩個抗藥性基因的一部分，隨后連接、克隆、轉化和藍白斑篩選。若lacZ基因存在錯誤，則破壞β-半乳糖苷酶活性，導致白斑的出現。通過這些實驗方法，白斑克隆的比例可轉化為錯誤摻入的數量。Sanger測序則提供了保真度的更直接讀取，可檢測所有突變。利用這種方法可確定聚合酶的整個突變譜。

　　何為高保真？

　　關于DNA聚合酶的高保真，目前還沒有統(tǒng)一的定義。人們往往與TaqDNA聚合酶比較，來判斷保真度的相對高低。例如，NEB（New EnglandBiolabs）的科學家測定Taq聚合酶的錯誤率為2.7x10-4 ±0.8x10-4，或每3700個堿基1個錯誤。這些數據表明，利用Taq以25個PCR循環(huán)擴增400bp的片段，可能一半的克隆都帶有錯誤。對于較大的片段如1kb，每個克隆都可能帶有不想要的突變。相比之下，NEB的Q5超保真聚合酶的錯誤率比Taq低100倍。根據這一數據，200個克隆中的199個將是正確的。